Морские гидробионты – перспективный источник средств профилактики радиационно-индуцированных нарушений

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

ВВЕДЕНИЕ: В современных условиях обстановки нестабильного мира возрастает угроза возникновения техногенных аварий на объектах ядерной энергетики, что требует активного поиска радиопротекторов, соответствующих требованиям безопасности, эффективности и надежности их применения при воздействии на организм ионизирующего излучения. Внимание исследователей этого направления на протяжении последних десятилетий привлекают биологически активные вещества (БАВ) из морских гидробионтов, представителями которых являются тритерпеновые гликозиды (голотурия) и сульфатированные полисахариды (фукоиданы бурых морских водорослей).
ЦЕЛЬ: Изучение и обобщение отечественного и мирового опыта, накопленного в результате проводимых исследований в России и за рубежом; поиск путей предотвращения, минимизации негативных пострадиационных эффектов и коррекции этих нарушений с помощью биологически активных соединений, полученных из морских гидробионтов.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ: Использованы материалы отечественных и зарубежных авторов, охватывающие исторический период от начала создания атомного оружия до новейшей истории, характеризующейся угрозой применения «грязных бомб», террористических атак на мирные объекты атомной энергетики (АЭС). Поиск проводился по международным и российским базам данных (PubMed, eLIBRARY.RU), а также выборке статей по поисковому запросу (см. ключевые слова).
РЕЗУЛЬТАТЫ: Установлено, что полисахариды и полифенольные соединения занимают ведущее место во многих публикациях ввиду их низкой токсичности сравнительно с другими природными или коммерческими радиозащитными агентами. Дана оценка связи ключевых радиопротекторных свойств (антиоксидантное, антирадикальное, противовоспалительное, антистрессорное) с радиозащитной активностью БАВ. Охарактеризованы механизмы действия различных радиопротекторов.
ОБСУЖДЕНИЕ: До настоящего времени сохраняет актуальность проблема практической фармакологии – создание эффективных препаратов противорадиационной защиты человека. В кризисных (аварийных) условиях применение радиопротекции и поддержка гемопоэтической функции организма являются важнейшим фактором в исходе борьбы организма за выживание. Однако кроме аварийных ситуаций в последнее время в научной среде часто упоминается новое предназначение радиозащитных средств как средств профилактики поражений, вызываемых низкодозовым и хроническим облучением. Результаты научных экспериментов во всем мире свидетельствуют о едином мнении российских и зарубежных ученых относительно позитивного радиопротекторного действия разных групп БАВ из морских гидробионтов (тритерпеновые гликозиды, сульфатированные полисахариды, хитозан и др.). Вместе с тем обсуждаются разнонаправленные научные подходы к оценке воздействия на организм хронического и малодозового облучения («радиационного гормезиса» и «беспороговой концепции радиационного эффекта»). Предложенные для дискуссии научные взгляды на единую проблему предполагают актуальность дальнейшего научного поиска путей преодоления негативного влияния эффектов радиоиндуцированного повреждения биологического организма.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ: Морские гидробионты могут рассматриваться как высокоперспективный источник биологически активных веществ для создания фармацевтических препаратов. Разнообразный спектр их биологической активности обусловливает интерес к ним ученых во всем мире. Пристальное внимание отечественных ученых к данной теме обусловлено рядом причин: выгодное географическое расположение (непосредственное прилегание акватории Тихого океана к границам Дальнего Востока и Приморского края), экономичность добычи сырья и производства биологической субстанции, быстрая естественная воспроизводимость ресурсной базы, а также превосходство биологических свойств получаемого материала над зарубежными аналогами.

Об авторах

С. Ф. Половов

Дальневосточный филиал Государственного научно-исследовательского испытательного института военной медицины;
Дальневосточный федеральный университет (ДВФУ), Школа медицины, Департамент клинической медицины

Автор, ответственный за переписку.
Email: polovovsf@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9983-4299

Половов Сергей Федорович – кандидат  медицинских наук, доцент, начальник 2-го научно- исследовательского испытательного 
отдела

690080, Россия, г. Владивосток, ул. Борисенко, д. 100

Россия

Л. А. Иванушко

Дальневосточный филиал Государственного научно-исследовательского испытательного института военной медицины

Email: l.iva_57@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9525-668X

Иванушко Людмила Александровна – кандидат  медицинских наук, научный сотрудник 1-го научно-исследовательского испытательного отдела

690080, Россия, г. Владивосток, ул. Борисенко, д. 100

Россия

Т. П. Смолина

Дальневосточный филиал Государственного научно-исследовательского испытательного института военной медицины

Email: tsmol@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4505-3627

Смолина Татьяна Павловна – кандидат  биологических наук, старший научный сотрудник 2- го научно-исследовательского испытательного отдела

690080, Россия, Владивосток, ул. Борисенко, д. 100

Россия

Список литературы

  1. Половов С.Ф., Кузьмин А.П. Клинические аспекты воздействия малых доз ионизирующего излучения на человека // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2007. Т. 31, № 1. С.10–11
  2. Арутюнян Р.В., Большов Л.А., Боровой А.А., Велихов Е.П. Системный анализ причин и последствий аварии на АЭС «Фукусима-1». Ин-т проблем безопасного развития атомной энергетики РАН. М.: ИБРАЭ РАН. 2018. 408 с. ISBN 978-5-9907220-5-7
  3. Голиков В.Ю. Дозиметрия внешнего облучения населения: сравнение аварий на Чернобыльской АЭС и АЭС «Фукусима-1» // Радиационная гигиена. 2020. Т. 13, № 1. С. 27–37
  4. Аклеев А.В., Дегтева М.О., Крестинина Л.Ю. Сравнительный анализ медико-дозиметрических последствий аварии 1957 г. и загрязнения реки Течи в контексте эффективности защитных мероприятий // Радиационная гигиена. 2020. Т. 13, № 1. С. 16–26. https://doi.org/:10.21514/1998-426X-2020-13-1-16-26
  5. Осиф Б.А., Баратта Э.Дж., Конклинг Т.В. TMI 25 лет спустя: авария на атомной электростанции Три-Майл-Айленд и ее последствия: [англ.]. Юниверсити-Парк, Пенсильвания: издательство Пенсильванского государственного университета. 2004. 195 с.
  6. Сэмюэл Дж. Уокер. Три-Майл-Айленд: ядерный кризис в исторической перспективе. Беркли: University of California Press. 2004. 317 с.
  7. Жупанский О.Я. Оценка радиационной обстановки в зоне ответственности Тихоокеанского флота // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2008. T. 35, № 4. С. 25
  8. Zvyagintseva T.N., Usoltseva R.V., Shevchenko N.M., Surits V.V., Imbs T.I., Malyarenko O.S., Ermakova S.P., Besednova N.N., Ivanushko L.A. Structural diversity of fucoidans and their radioprotective effect. Carbohydrate Polymers, 2021, Vol. 273, pp. 118551. doi: 10.1016/j.carbpol.2021.118551.
  9. Wang W., Xue C, Mao X. Radioprotective effects and mechanisms of animal, plant and microbial polysaccharides. Int J Biol Macromol., 2020, Vol. 153, pp. 373–384. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2020.02.203. Epub 2020 Feb 19.
  10. Abraham R.E., Alghazwi M., Liang Q., Zhang W. Advances on marine-derived natural radioprotection compounds: historic development and future perspective. Mar Life Sci Technol., 2021, Vol. 4, № 3, pp. 474–487. doi: 10.1007/s42995-021-00095-x.
  11. Riley P.A. Free radicals in biology: oxidative stress and the effects of ionizing radiation. Int J Radiat Biol., 1994, Vol. 65, pp. 27–33.
  12. Pastina B., LaVerne J.A. Effect of molecular hydrogen on hydrogen peroxide in water radiolysis. J Phys Chem A., 2001, Vol. 105, pp. 9316–9322.
  13. Hosseinimehr S.J. Trends in the development of radioprotective agents. Drug Discov Today, 2007, Vol. 4, No. 12, pp. 794–805. doi: 10.1016/j.drudis.2007.07.017
  14. Santini V., Giles F.J. The potential of amifostine: from cytoprotectant to therapeutic agent. Haematologica, 1999, Vol. 3, No. 84, pp. 1035–1042.
  15. Rades D., Fehlauer F., Bajrovic A., Mahlmann B., Richter E., Alberti W. Serious adverse effects of amifostine during radiotherapy in head and neck cancer patients. Radiother Oncol., 2004, Vol. 6, No. 70, pp. 261–264. doi: 10.1016/j.radonc.2003.10.005
  16. Arora R., Gupta D., Chawla R., Sagar R., Sharma A., Kumar R., Prasad J., Singh S., Samanta N., Sharma R.K. Radioprotection by plant products: present status and future prospects. Phytother Res., 2005, Vol. 5, No. 19, pp. 1–22. doi: 10.1002/ptr.1605
  17. Kim H.J., Kim M.H., Byon Y.Y., Park J.W., Jee Y., Joo H.G. Radioprotective effects of an acidic polysaccharide of Panax ginseng on bone marrow cells. J Vet Sci., 2007, Vol. 14, No. 8, pp. 39–44. doi: 10.4142/jvs.2007.8.1.39
  18. Wang Z.W., Zhou J.M., Huang Z.S., Yang A.P., Liu Z.C., Xia Y.F., Zeng Y.X., Zhu X.F. Aloe polysaccharides mediated radioprotective effect through the inhibition of apoptosis. J Radiat Res., 2004, Vol. 8, No. 45, pp. 447–454. doi: 10.1269/jrr.45.447
  19. Silva T.R., Duarte A.W.F., Passarini M.R.Z., Ruiz A.L.T.G., Franco C.H., Moraes C.B., De Melo I.S., Rodrigues R.A., Fantinatti-Garboggini F., Oliveira V.M. Bacteria from Antarctic environments: diversity and detection of antimicrobial, antiproliferative, and antiparasitic activities. Polar Biol., 2018, Vol. 41, pp. 1505–1519. doi: 10.1007/s00300-018-2300-y
  20. Silva TR, Canela-Garayoa R, Eras J, Rodrigues MVN, dos Santos FN, Eberlin MN, Neri-Numa IA, Pastore GM, Tavares RSN, Debonsi HM, Cordeiro LRG, Rosa LH, Oliveira VM. 2019. Pigments in an iridescent bacterium, Cellulophaga fucicola, isolated from Antarctica. Antonie Van Leeuwenhoek International Journal of General and Molecular Microbiology, 2019, Vol. 112, pp. 479-490 doi: 10.1007/s10482-018-1179-521.
  21. Анисимов М.М. Тритерпеновые гликозиды и структурно-функциональные свойства мембран // Биол. науки. 1987. № 10. С. 49–63.
  22. Fedorov S.N., Dyshlovoy S.A., Kuzmich A.S., Shubina L.K., Avilov S.A., Silchenko A.S., Bode A.M., Dong Z., Stonik V.A. In vitro anticancer activities of some triterpene glycosides from holothurians of Cucumariidae, Stichopodidae, Psolidae, Holothuriidae and Synaptidae families. Nat. Prod. Commun., 2016, Vol. 11, No. 9, pp. 1239–1242.
  23. Janakiram A.M., Bryant T., Lightfoot S., Collin P.D., Steele V.E., Rao C.V. Improved innate immune responses by Frondanol A5, a sea cucumber extract, prevent intestinal tumorigenesis. Cancer Prev. Res., 2015, Vol. 8, pp. 327–337.
  24. Menchinskaya E.S., Pislyagin E.A., Kovalchyk S.N., Davydova V.N., Silchenko A.S., Avilov S.A., Kalinin V.I., Aminin D.L. Antitumor activity of cucumarioside A2-2. Chemotherapy, 2013, Vol. 59, pp. 181–191.
  25. Ale M., Maruyama H., Tamauchi H., Mikkelsen J., Meyer A. Fucoidan from Sargassum sp. and Fucus vesiculosus reduces cell viability of lung carcinoma and melanoma cells in vitro and activates natural killer cells in mice in vivo. Int J Biol Macromol, 2011, Vol. 49, No. 3, pp. 331–336.
  26. Nigrelli R.F., Jakowska S. Effects of holothurin, a steroid saponin from the Bahamian sea cucumber (Actinopyga agassizi), on various biological systems. Annals of the New York Academy of Sciences, 1960, Vol. 90, pp. 884–892. doi: 10.1111/j.1749-6632.1960.tb26431.x.
  27. Lasley B.J., Nigrelli R.F. The effects of crude holothurin on leucocyte phagocytosis. Toxicon, 1970, Vol. 8, pp. 301–306. doi: 10.1016/0041-0101(70)90007-3
  28. Седов A.M., Аполлонин A.B., Севастьянова Е.К., Алексеева И.А., Батраков С.Г., Саканделидзе О.Г., Лиходед В.Г., Стоник В.А., Авилов С.А., Купера Е.В. Стимуляция тритерпеновыми гликозидами голотурий неспецифической антибактериальной резистентности мышей к условно-патогенным грамотрицательным микроорганизмам // Антибиотики и химиотерапия. 1990. Т. 35, № 1. С. 23–26
  29. Седов А.М., Елкина С.И., Сергеев В.В., Калина Н.Г., Саканделидзе О.Г., Батраков С.Г., Гиршович Е.С. Способность тритерпеновых гликозидов из голотурий стимулировать антибактериальную устойчивость на модели экспериментального сальмонеллеза мышей // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1984. № 5. С. 55–58.
  30. Седов А.М., Шепелева И.Б., Захарова Н.С., Саканделидзе О.Г., Сергеев В.В., Мошиашвили И.Я. Влияние кукумариозида (тритерпенового гликозида из голотурий Cucumaria japonica) на развитие иммунного ответа мышей на корпускулярную вакцину // Журнал микробиология, эпидемиологии и иммунобиологии. 1984. № 9. С. 100–104
  31. Chludil H.D., Murray A.P., Seldes A.M., Maier M.S. Biologically active triterpene glycosides from sea cucumbers. Studies in Natural Products Chemistry. Vol. 28, Part I, Ed. Atta-ur-Rahman. Elsevier Science B.V. 2003, Vol. 28, pp. 587–616.
  32. Ngo D-H., Kim S-K. Sulfated polysaccharides as bioactive agents from marine algae. Int J Biol Macromol., 2013, Vol. 62, pp. 70–75.
  33. Kandasamy S., Khan W., Kulshreshtha G., Evans F., Critchley AT., Fitton J., Stringer DN., Gardiner V-A., Prithiviraj B. The fucose containing polymer (FCP) rich fraction of Ascophyllum nodosum (L.) Le Jol. protects Caenorhabditis elegans against Pseudomonas aeruginosa by triggering innate immune signaling pathways and suppression of pathogen virulence factors. Algae, 2015, Vol. 30, pp. 147–161.
  34. Usov A.I., Zelinsky N.D. Chemical structures of algal polysaccharides. In: Domínguez H, editor Functional Ingredients from Algae for Foods and Nutraceuticals. Woodhead Publishing, Cambridge, 2013, pp. 23–86.
  35. Abad L.V., Kudo H., Saiki S., Nagasawa N., Tamada M., Katsumura Y., Aranilla C.T., Relleve L.S., De La Rosa A.M. Radiation degradation studies of carrageenans. Carbohydr Polym., 2009, Vol. 78, pp.100–106.
  36. Chertkov K.S., Gvozdeva N.I., Fedorenko B.S., Preobrazhenski Y.Y. 1986. Radioprotective and therapeutic efficacy of carrageenan during exposure to proton radiation. Kosm Biol Aviakosm Med., 1986, Vol. 20, 84–86.
  37. Nagasawa N., Mitomo H., Yoshii F., Kume T. Radiation-induced degradation of sodium alginate. Polym Degrad Stab., 2000, Vol. 69, pp. 279–285.
  38. Nesterenko A.V., Nesterenko V.B., Yablokov AV. Chapter IV. Radiation protection after the Chernobyl catastrophe. Ann NY Acad Sci., 2009, Vol. 1181, pp. 287–327.
  39. Höllriegl V., Röhmuss M., Oeh U., Roth P. Strontium biokinetics in humans: influence of alginate on the uptake of ingested strontium. Health Phys., 2004, Vol. 86, pp. 193–196.
  40. Berteau O., Mulloy B. Sulfated fucans, fresh perspectives: structures, functions, and biological properties of sulfated fucans and an overview of enzymes active toward this class of polysaccharide. Glycobiology, 2003, No. 13, pp. 29–40. doi: 10.1093/glycob/cwg058
  41. Kiple K.F., Ornelas K.C. Important Vegetable Supplements. In: Beck S.V., editor. The Cambridge World History of Food. Cambridge University Press; Cambridge, UK. 2000, Vol. 1, pp. 231–249.
  42. Koyanagi S., Tanigawa N., Nakagawa H., Soeda S., Shimeno H. Oversulfation of fucoidan enhances its anti-angiogenic and antitumor activities. Biochem Pharmacol., 2003, Vol. 65, № 2, pp. 173–179. doi: 10.1016/s0006-2952(02)01478-8
  43. Иванушко Л.А., Имбс Т.И. Сравнительное изучение цитокининдуцирующих свойств фукоидана из бурых водорослей Fucus evanescens и его производных // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2017. Т. 70, № 3. С. 60–62.
  44. Кузнецова Т.А., Смолина Т.П., Беседнова Н.Н., Сильченко А.С., Имбс Т.И., Ермаков С.П. Влияние сульфатированных полисахаридов из бурой водоросли Fucus evanescens и продукта их ферментативной трансформации на функциональную активность клеток врожденного иммунитета // Антибиотики и химиотерапия. 2016. Т. 61, № 7–8. С. 10–14.
  45. Шутикова А.Л., Иванушко Л.А., Маляренко О.С., Ермакова С.П. Влияние фукоидана на показатели кроветворения облученных мышей // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2017. T. 70, № 3. С. 102–105
  46. Lee J., Kim J., Moon C., Kim S., Hyun J., Park J., Shin T. Radioprotective effects of fucoidan in mice treated with total body irradiation. Phytother Res., 2008, Vol. 22, pp. 1677–1681.
  47. Byon Y.Y., Kim M.H., Yoo E.S., Hwang K.K., Jee Y., Shin T., Joo H.G. Radioprotective effects of fucoidan on bone marrow cells: improvement of the cell survival and immunoreactivity. J Vet Sci., 2008, Vol. 9, No. 4, pp. 359–365. doi: 10.4142/jvs.2008.9.4.359.
  48. Hsin-Hsien Yu, Edward Chengchuan KO, Chia-Lun Chang, Kevin Sheng-Po Yuan, Alexander T.H. Wu, Yan-Shen Shan, Szu-Yuan Wu. Fucoidan Inhibits Radiation-Induced Pneumonitis and Lung Fibrosis by Reducing Inflammatory Cytokine Expression in Lung Tissues. Mar Drugs. 2018, Vol. 16, № 10, P. 392. https://doi.org/:10.3390/md16100392
  49. Kim A., Jin Bing S., Cho J., Ahn G., Lee J.H., Jeon Y.J., Lee BG, Jee Y. Protective effect of Hizikia fusiforme on radiationinduced damage in splenocytes. Korean J Vet Res, 2015, Vol. 55, pp. 21–30.
  50. Kim J., Moon C., Kim H., Jeong J., Lee J., Kim J., Hyun J.W., Park J.W., Moon M.Y., Lee N.H., Kim S.H., Jee Y., Shin T. The radioprotective effects of the hexane and ethyl acetate extracts of Callophyllis japonica in mice that undergo whole body irradiation. J Vet Sci, 2008, Vol. 9, pp. 281–284.
  51. Shin T., Kim H.C., Kim J.T., Ahn M.J., Moon C.J., Hyun J.W., Jee Y.H., Lee N.H., Park J.W. A comparative study of radioprotection with Callophyllis japonica extract and amifostine against lethal whole body gamma irradiation in mice. Orient Pharm Exp Med, 2010, Vol. 10, pp. 1–6.
  52. Mazo V.K., Gmoshinskii I.V., Sokolova A.G., Zorin S.N., Danilina L.L., Litvinova A.V., Radchenko S.N. Effect of biologically active food additives containing autolysate of baker’s yeast and spirulina on intestinal permeability in an experiment. Voprosy Pitaniya, 1999, Vol. 68, pp. 17–19.
  53. Gomes T., Xie L., Brede D., Lind O.C., Solhaug K.A., Salbu B., Tollefsen K.E. (2017) Sensitivity of the green algae Chlamydomonas reinhardtii to gamma radiation: photosynthetic performanceand ROS formation. Aquat Toxicol, 2017, Vol. 183, pp. 1–10.
  54. Kang N., Lee J-H., Lee W., Ko J-Y., Kim E-A., Kim J-S., Heu M-S., Kim GH., Jeon Y-J. 2015. Gallic acid isolated from Spirogyra sp. improves cardiovascular disease through a vasorelaxant and antihypertensive effect. Environ Toxicol Pharmacol., 2015, Vol. 39, pp. 764–772.
  55. Martone P.T., Estevez J.M., Lu F., Ruel K., Denny M.W., Somerville C., Ralph J. Discovery of lignin in seaweed reveals convergent evolution of cell-wall architecture. Curr Biol., 2009, Vol. 19, pp. 169–175.
  56. Li Y-X., Wijesekara I., Li Y., Kim S-K. Phlorotannins as bioactive agents from brown algae. Process Biochem, 2011, Vol. 46, pp. 2219–2224.
  57. Eom S.H., Moon S-Y., Lee D-S., Kim H-J., Park K., Lee E-W., Kim T.H., Chung Y-H., Lee M-S., Kim Y-M. In vitro antiviral activity of dieckol and phlorofucofuroeckol-A isolated from edible brown alga Eisenia bicyclis against murine norovirus. Algae, 2015, Vol. 30, pp. 241–246.
  58. Lee S-H., Kang S-M., Sok C.H., Hong J.T., Oh J-Y., Jeon Y-J. Cellular activities and docking studies of eckol isolated from Ecklonia cava (Laminariales, Phaeophyceae) as potential tyrosinase inhibitor. Algae, 2015, Vol. 30, pp. 163–170.
  59. Shin T., Ahn M., Hyun JW., Kim SH., Moon C. Antioxidant marine algae phlorotannins and radioprotection: a review of experimental evidence. Acta Histochem., 2014, Vol. 116, pp. 669–674.
  60. Lee J-H., Ko J-Y., Oh J-Y., Kim E-A., Kim C-Y., Jeon Y-J. Evaluation of phlorofucofuroeckol-A isolated from Ecklonia cava (Phaeophyta) on anti-lipid peroxidation in vitro and in vivo. Algae, 2015a, Vol. 30, pp. 313–323. doi: 10.4490/algae.2015.30.4.313
  61. Park E., Ahn G.-N., Lee N.H., Kim J.M., Yun J.S., Hyun J.W., Jeon Y.-J., Wie M.B., Lee Y.J., Park J.W., Jee Y. Radioprotective properties of eckol against ionizing radiation in mice. FEBS Lett., 2008, Vol. 582, pp. 925–930.
  62. Heo S-J., Jeon Y-J. Protective effect of fucoxanthin isolated from Sargassum siliquastrum on UV-B induced cell damage. J Photochem Photobiol B Biol, 2009, Vol. 95, pp. 101–107.
  63. Venkatachalam S.R. Chattopadhyay S. Natural radioprotective agents: an overview. Curr Org Chem., 2005, № 9, pp. 389–404.
  64. Fernando I.P.S., Kim M., Son K-T., Jeong Y., Jeon Y-J. Antioxidant activity of marine algal polyphenolic compounds: a mechanistic approach. J Med Food, 2016, Vol. 19, pp. 615–628.
  65. Salgado L.T., Tomazetto R., Cinelli L.P., Farina M., Amado Filho G.M. The influence of brown algae alginates on phenolic compounds capability of ultraviolet radiation absorption in vitro. Braz J Oceanogr., 2007, Vol. 55, pp. 145–154.
  66. Камская В.Е. Хитозан: структура, свойства и использование // Научное обозрение. Биологические науки. 2016. № 6. С. 36–42
  67. Гринь С.А., Албулов А.И., Фролова М.А., Самуйленко А.Я., Гринь А.В., Ковалева Э.И., Мельник Н.В., Мельник Р.Н., Варламов В.П., Матвеева И.Н., Хаконов А.А., Шабунин С.В., Беро И.Л., Киш Л.К. Перспективы использования хитозана в качестве радиопротектора // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2019. № 6. С. 54–57
  68. Кострюкова Н.К., Карпин В.А. Биологические эффекты малых доз ионизирующего излучения // Сиб. мед. журн. (Иркутск). 2005. Т. 50, № 1. С. 17–22.
  69. Лаки Т.Д. Физиологические преимущества низких уровней ионизирующего излучения // Физ. здоровья. 1982. Вып. 43, № 6. С. 771–789.
  70. Маргулис У.Я. Беспороговая и пороговая концепции радиационных эффектов. Ядерная энциклопедия. М., 1996. С. 384–386
  71. Грейб Р. Эффект Петко: влияние малых доз радиации на людей, животных и деревья. М., 1994. 263 с.
  72. Грейб Р. Действие малых доз ионизирующего излучения: Эффект Петко. Ядерная энциклопедия. М. 1996. С. 387–394.
  73. Сложеникина Л.В., Макар В.Р., Коломийцева И.К. Катехоламинергическая система в гипоталамусе при хроническом гамма-облучении крыс // Радиац. биология. Радиоэкология. 1997. Т. 37, № 1. С. 25–29
  74. Гончаренко Е.Н., Антонова С.В., Ахалая М.Я., Кудряшов Ю.Б. Влияние малых доз ионизирующей радиации на уровень содержания катехоламинов и кортикостероидов в надпочечниках мышей // Радиац. биология. Радиоэкология. 2000. Т. 40, № 2. С. 160–161
  75. Потапова В.В., Федянина Л.Н., Маслов В.П. Биологически активные добавки из морских гидробионтов Тихого океана – средства массовой профилактики последствий облучения человека // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2002. T. 8–9, № 4–5. С. 54.
  76. Гончарова Р.И., Смолич И.И. Генетическая эффективность малых доз ионизирующей радиации при хроническом облучении мелких млекопитающих // Радиац. биология. Радиоэкология, 2002, Т. 42, № 6, С. 654–660
  77. Jiao G., Yu G., Zhang J., Ewart H.S. Chemical structures and bioactivities of sulfated polysaccharides from marine algae. Mar Drugs, 2011, No. 9, pp. 96–223. doi: 10.3390/md9020196
  78. Pomin V.H. Marine non-glycosaminoglycan sulfated glycans as potential pharmaceuticals. Pharmaceuticals. 2015, No. 8, pp. 848–864. doi: 10.3390/ph8040848
  79. Jesus Raposo M.F., Morais A.M., Morais R.M. Marine polysaccharides from algae with potential biomedical applications. Mar Drugs, 2015, Vol. 13, № 5, pp. 2967–3028. doi: 10.3390/md13052967
  80. Cumashi A., Ushakova N.A., Preobrazhenskaya M.E., D’Incecco A., Piccoli A., Totani L., et al. A comparative study of anti-inflammatory, anticoagulant, antiangiogenic, and antiadhesive activities of nine different fucoidans from brown seaweeds. Glycobiology, 2007, Vol. 17, pp. 541–552. doi: 10.1093/glycob/cwm014
  81. Подкорытова А.В., Рощина А.Н., Евсеева Н.В., Усов А.И., Головин Г.Ю., Попов А.М. Бурые водоросли порядков Laminariales и Fucales Сахалино-Курильского региона: запасы, добыча, использование. Труды ВНИРО. 2020. Т. 181. С. 235–256
  82. Гурулева О.Н., Аминина Н.М. Исследование содержания фукоидана в бурых водорослях Дальневосточного региона // Известия ТИНРО. 2013. Т. 172. С. 265–273

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Половов С.Ф., Иванушко Л.А., Смолина Т.П., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах